|
6. Основные методы стерилизации. Примеры дезинфекантов высокого уровня и стерлянтов.
Химическую дезинфекцию не следует применять • Когда вместо нее можно использовать термообработку • Когда можно экономно использовать одноразовое оборудование Использование дезинфектантов • Необходимо строго следовать инструкции на этикетке • Предметы должны быть полностью очищены и отмыты • Предметы должны быть высушены, чтобы избежать разбавления • Дезинфицируются только поверхности, находящиеся в контакте • Надевайте защитную одежду • Используйте в хорошо вентилируемых помещениях Ошибки дезинфекции • Неправильное разведение растворов дезинфектантов • Несоответствующая продолжительность использования раствора • Реконтаминация после дезинфекции • Неправильный выбор процесса дезинфекции для специфических предметов • Неадекватная экспозиция всех поверхностей к раствору Обеззараживание УФ-лучами Ультрафиолетовое облучение (УФО) Преимущества: Эффективность в отношении бактерий, содержащихся в ядрышковой фазе капель. Высокая эффективность в отношении бактерий и вирусов. Недостатки: Крайне слабая пенетрация через пыль, слизь или воду. Отсутствие эффекта при высокой относительной влажности. Необходимость мониторинга, частой очистки и замены источников УФО. (т. к. с течением времени они теряют свою эффективность). Способность вызывать ожоги глаз и кожи. Сомнительная экономическая эффективность. Эффективность обеззараживания УФ-лучами зависит от: • интенсивности и продолжительности облучения • относительной влажности воздуха • вида и характера микроорганизмов • уровней загрязненности воздуха и поверхностей • степени экранирования микроорганизмов • характера поверхностей, на которых находятся микроорганизмы Эффект от воздействия УФ-лучей имеет место при: • расстоянии не более 2 метров • относительной влажности воздуха от 40 до 70% • на светлых поверхностях (при тех же условиях на темных поверхностях остается на 10-20% микробов больше) Типичные ошибки при использовании УФО: • несоблюдение режимов облучения • несоответствие типа и количества облучателей 61 • неучет «возраста» ламп • «преувеличенные ожидания» Процессам репарации микробных клеток способствуют: • видимый свет • контакт с субстратами питания • пониженная температура и др. Бактерицидные лампы нельзя использовать при дневном свете, при загрязненных поверхностях, при низкой температуре воздуха. Неоправданно широкое, а тем более неграмотное использование УФ-излучения в ЛПУ может порождать у персонала ложное впечатление о надежной санации помещения и защищенности от профессиональных вредностей. Основные методы стерилизации I. Термические • Паровая стерилизация. • Воздушная (сухожаровая) стерилизация. II. Химические • Оксид этилена (газовая стерилизация). • Стерилизация растворами (глютеральдегид). III. “Холодные” методы стерилизации (радиочастотный, радиационный и т.д.). Паровая стерилизация Суть метода: стерилизующим агентом является насыщенный водяной пар под высоким давлением. Является наиболее распространенным и предпочтительным методом стерилизации инструментов, которые переносят высокую температуру и влажность. Основные преимущества: • Надежность. • Высокая эффективность. • Хорошая способность проникать в ткани. • Отсутствие токсичности. • Низкая стоимость. • Возможность использования для стерилизации жидкостей. Основные недостатки: • Ряд инструментов не выдерживает обработки водяным паром при высоких температурах. • Паровой метод не применим для стерилизации порошков и масел. Воздушная стерилизация Суть метода: стерилизующим агентом является сухой горячий воздух. Основные преимущества: • Возможность использования для стерилизации порошков, безводных масел, стекла. • Проникновение во все части инструментов, которые не могу быть механически разобраны. 62 • Отсутствие коррозийного эффекта. • Низкая стоимость Основные недостатки: • Медленное и неравномерное проникновение в материалы. • Необходимость длительной экспозиции. • Повреждение резиновых изделий и некоторых тканевых материалов. • Ограниченный перечень упаковочных материалов для инструментов: нельзя использовать пергамент и ткани. Газовая стерилизация Суть метода: стерилизация осуществляется за счет процесса алкилирования (т. е. замещения атома водорода на алкильный радикал). Основные преимущества: • Возможность стерилизации инструментов, которые не могут подвергаться паровой или воздушной стерилизации, без ущерба для качества. Основные недостатки: • Трудность мониторирования процесса стерилизации (отсутствие химических индикаторов, показывающих концентрацию оксид этилена во время стерилизации). • Длительность цикла стерилизации. • Высокая стоимость. • Токсичность для пациентов и персонала. Практические критерии, используемые для выбора процесса • Материалы, из которых сделан прибор • Устройство прибора • Окружающая среда, в которой прибор будет использоваться • Время обращения • Стоимость, доступность разных методов стерилизации/дезинфекции 63 Приложение №3 ЦЕЛЬ И ОБЩИЕ ПОЛОЖЕНИЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ГНОЙНО-СЕПТИЧЕСКИХ ИНФЕКЦИЙ (методические рекомендации) ЦЕЛЬ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ГНОЙНО-СЕПТИЧЕСКИХ ИНФЕКЦИЙ диагностика гнойно-септических инфекций (ГСИ); изучение этиологической структуры; определение чувствительности возбудителей к антибактериальным препаратам; возможность выбора наиболее эффективного препарата для антибактериальной терапии; своевременное проведение мероприятий для профилактики внутрибольничных ГСИ ОСОБЕННОСТИ ГНОЙНО-СЕПТИЧЕСКИХ ИНФЕКЦИЙ возбудителями ГСИ наиболее часто являются условно-патогенные микроорганизмы (УПМ), входящие в состав естественной микрофлоры человека; УПМ вызывают заболевания преимущественно у людей с пониженной иммунологической реактивностью; этиологическая структура ГСИ непостоянна; часто встречаются ассоциации микроорганизмов; микробиологические исследования при заболеваниях, вызванных УПМ, направлены на выделение всех микроорганизмов, находящихся в патологическом материале МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА кровь; моча; отделяемое из нижних отделов дыхательных путей; отделяемое из верхних отделов дыхательных путей; цереброспинальная жидкость; отделяемое из женских половых органов; отделяемое из уретры у мужчин; отделяемое ран и выпотов; отделяемое глаз и ушей; желчь; испражнения; амниотическая жидкость; материал, полученный на операции и во время паталогоанатомического исследования 64 ОБЩИЕ ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ МАТЕРИАЛА ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ • брать материал до начала антибактериальной терапии или через определенный промежуток времени после введения препарата, необходимый для его выведения из организма (практически через 8 - 10 ч после введения большинство антибиотиков уже выводится из организма) • брать материал непосредственно из очага инфекции из очага инфекции или исследовать соответствующее отделяемое (гной из фистулы, мочу, желчь и т.д.); • брать материал во время наибольшего содержания в нем возбудителей заболевания; • соблюдать строжайшую асептику во избежание загрязнения пробы микрофлорой окружающей среды • материал для выделения аэробов и факультативных анаэробов брать стерильными ватными тампонами, шприцем в стерильную посуду; • материал для выделения строгих анаэробов получать из патологического очага путем пункции шприцем, из которого предварительно должен быть удален воздух; • количество материала должно быть достаточным для проведения исследования и для его повторения в случаях необходимости; • транспортировку нативного клинического образца в лабораторию следует производить в максимально короткие сроки - это определяет эффективность микробиологического исследования. Продолжение »
|
|